pcr退火溫度怎麼確定,PCR退火溫度如何設定

時間 2021-08-11 18:15:20

1樓:神無幸村

熔解溫度(tm)是引物的乙個重要引數。這是當50%的引物和互補序列表現為雙鏈dna分子時的溫度.tm對於設定pcr退火溫度是必需的。

在理想狀態下,退火溫度足夠低,以保證引物同目的序列有效退火, 同時還要足夠高,以減少非特異性結合。合理的退火溫度從55℃到70℃。退火溫度一般設定比引物的 tm低5℃。

設定tm有幾種公式。有的是**於高鹽溶液中的雜交,適用於小於18鹼基的引物。 有的是根據gc含量估算tm。

確定引物tm最可信的方法是近鄰分析法。這種方法從序列一級結構和相鄰鹼基的特性**引物的雜交穩定性。大部分電腦程式使用近鄰分析法。

根據所使用的公式及引物序列的不同,tm會差異很大。因為大部分公式提供乙個估算的tm值,所有退火溫度只是乙個起始點。可以通過分析幾個逐步提高退火溫度的反應以提高特異性。

開始低於估算的tm5℃,以2℃為增量,逐步提高退火溫度。較高的退火溫度會減少引物二聚體和非特異性產物的形成。

為獲得最佳結果,兩個引物應具有近似的tm值。引物對的tm差異如果超過5℃,就會引物在迴圈中使用較低的退火溫度而表現出明顯的錯誤起始。如果兩個引物tm不同,將退火溫度設定為比最低的tm低5℃

或者為了提高特異性,可以在根據較高tm設計的退火溫度先進行5個迴圈,然後在根據較低tm設計的退火溫度進行剩餘的迴圈。這使得在較為嚴緊的條件下可以獲得目的模板的部分拷貝。

2樓:匿名使用者

我是採用primer5軟體推薦的tm值作為退火溫度的,基本都是可行的。如果pcr結果不好,可以上下浮動幾度進行梯度pcr進行退火溫度的優化。

3樓:小蠻

計算退火溫度的方法:

1. 退火溫度=4×(g+c)+2×(a+t)-(5~8) 只是粗算,有時不靈,但比較簡便。

2.用primer5(or oligo6)計算,引物配對好後,primer5可以顯示tm,我認為這個值就是退火溫度,我的經驗再加2 or 3度最好。

3.合成引物的單子上也有個tm,減去5~8也可,但有些公司提供的tm就是方法1計算的。

我認為方法二最準確,不知道還有其他方法嗎?

如何確定pcr反應中的退火溫度和延長時間

4樓:禾鳥

1、退火溫度低於引物tm值5 ℃左右,一般在45~55℃。

退火溫度需要從多方面去決定,一般根據引物的tm值(tm值=4(g+c) +2(a+t))為參考,根據擴增的長度適當下調作為退火溫度。然後在此次實驗基礎上做出預估。退火溫度對pcr的特異性有較大影響。

引物延伸一般在72℃進行(taq酶最適溫度)。但在擴增長度較短且退火溫度較高時,本步驟可省略延伸時間隨擴增片段長短而定,一般推薦在1000bp以上,含pfu及其衍生物的衍生設定為1min/kbp。

擴充套件資料

pcr的過程:

1、dna變性:(90℃-96℃):雙鏈dna模板在熱作用下,氫鍵斷裂,形成單鏈dna

2、退火:(60℃-65℃):系統溫度降低,引物與dna模板結合,形成區域性雙鏈。

3、延伸:(70℃-75℃):在taq酶(在72℃左右,活性最佳)的作用下,以dntp為原料,從引物的3′端開始以從5′→3′端的方向延伸,合成與模板互補的dna鏈。

5樓:匿名使用者

退火溫度一般是比你設計引物時的tm值低5度。不過這是要摸索的,用溫度梯度pcr。(順便說一下,如果你不想花時間摸索溫度,建議就用60度。

這個溫度是我原來做實驗時的萬能溫度。尤其對較短片段pcr適用)

延長時間是看pcr產物長度,一般認為常規taq酶一分鐘擴增1kb。比如你的pcr產物是500bp,你就用30秒。不過我一般會在這個基礎上再加5秒左右。

pcr退火溫度如何設定

6樓:匿名使用者

一般是引物tm值減去5度~但退火溫度不能太低~否則會造成非特異性結合~

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