在用液氮提取rna時,應該注意什麼

時間 2023-01-15 01:15:07

1樓:淵源

1)、準備凍存管、凍存盒放置需液氮中儲存的樣品。

2)、液氮中有三個取液氮容器,不宜直接將凍存管放於液氮罐中,這樣會使 凍存管漂浮起來。固可用紗布、棉線將取氮容器口封住,儲存樣品。

3)、採樣品時,需要使用研缽。研缽在使用前,需清洗,並用純酒精灼燒以 充分滅菌。在研磨液氮儲存的樣品時,需加入液氮,迅速研磨,待組織變軟, 再加少量液氮,再研磨。

如此三次。可用消毒過的鑰匙將研缽中的組織樣品轉入 ep 管中。介於所取的樣品不能完全轉移到 ep 管中,故而在取樣時需多採樣品, 以免不夠。

4)、新買的液氮罐需用一定液氮進行清洗與預冷。固相對於10公升液氮罐第一 次需定15公升液氮。液氮可有效儲存樣品半個月。

提取rna的植物組織,液氮可以儲存多久

2樓:匿名使用者

最好是採集完了之後用液氮速凍後,存放在-70的超低溫冰箱裡。-20度並不能存多久,尤其是如果你要用來做cdna文庫這類對rna質量要求很高的實驗的話是絕對不行的。

如何選擇正確的rna提取方法

3樓:匿名使用者

biodai離心法對於拭子的bai處理,向離心du

管中加入800μl生理鹽zhi水dao,將拭子版收集的樣本置於生理鹽水中,涮洗20秒,使細。

權胞完全脫落,貼離心管壁擠乾拭子上的液體,12,000 rpm 離心5 min,棄700 μl上清,剩餘100μl上清,充分振盪混勻15秒。

液氮冷凍**後需要注意什麼?

4樓:網友

一)病人於**中,會感到刺痛,**後數小時,可能有水泡形成,如果患部位於關節附近,則可能會有**腫脹的情形,而且會持續數天,不過這些都是**後正常的反應,不需過度的擔心,會自然痊癒。最好不要將水皰弄破,任其自然就可以了。

(二)如果水泡不小心弄破,有滲出液時,傷口早晚應用生理食鹽水或煮沸後冷開水,清洗傷口並塗抹消炎藥膏,再用砂布包紮即可。

(三)一些頑固的病灶,需多次療程,才能達到**的療效,病人必須與醫師配合,按時回診、**,以避免**。

cdna為什麼-20℃儲存,rna要在液氮罐中儲存,這兩個儲存的溫度為什麼不一樣

5樓:一滴雪花舞

因為rna在離體後非常不穩定,很容易被降解,故一般是在零下七八十℃下長期儲存,而逆轉成cdna後,它的穩定性比較高,所以零下二十度也就可以儲存一二十年的,如果更長期,那也可以儲存在液氮中的。

如何防止提取過程中rna的降解

6樓:魚骨頭

因為自然界bai(實驗du室)普遍存在。

zhirna酶,提取時需要注意幾dao點:

1、所用版試劑、耗材需用depc水浸泡然後高權壓滅菌2、實驗時戴口罩,主要是防止呼吸、說話時rna酶進入試劑中3、實驗台保持清潔、降低環境rna酶。

4、rna提取後,放入-80攝氏度儲存,防止降解。

7樓:人生如夕陽

我覺得rna在提取過程中並不是很容易降解,勻漿可以用勻漿器,機械打磨的效果可能要比手工去 勻漿要高效一點。

我用的也是tripure或trizol,所以並不太清楚應該怎麼配試劑,下面的方法可以一試。

total rna提取。

total rna extract

1. cell sample (50mg)+lysis (denaturation liquor) +巰基乙醇1.

6ul,充分混勻,此液體可放於-20℃儲存1-2 months。組織則先進行勻漿。所有操作均在4℃進行。

2. +平衡酚(飽和酚)500ul (ph ,充分mixture for 3min

3. 2m 醋酸鈉 50ul,混勻(

4. 氯仿/異戊醇 (49:1) 100ul,上下顛倒混勻。

5. 冰浴 15min

6. 4℃ 13000rpm for 10min

7. 吸上清;加氯仿/異戊醇 500ul,搖勻2min

8. 12000g (13000rpm) for 10min

9. 吸上清,加異丙醇 500ul,混勻,-20℃沉澱20min以上。

10. 12000g (13000rpm) for 10-15min

11. 棄上清,75%乙醇(4℃)500ul,洗沉澱。

12. 12000g (13000rpm) for 10min

13. 棄上清, 37℃烤箱5min,或室溫乾燥。

14. 取適量水溶rna(1*te)

15. –20℃或-70℃儲存。

reagents

1 變性液。

異硫氰酸胍

檸檬酸鈉 十二烷基肌氨酸鈉

+ h2o 至 50ml

2.2m 醋酸鈉。

naac +ddh2o, 以hac調ph至, 加水至50ml

3.氯仿/異戊醇 (49:1)

4. 75%乙醇。

from our lab

result:

260/280=左右。

關鍵點:吸取水相時寧少勿多。

本方法優點:簡便,不需kit,費時少,費用低,細胞組織均適合,不需超高速,對大多數實驗均適合。

缺點:不能一步分離出蛋白質和dna。不過我曾想同時抽提dna,但沒試過,但理論上是可行的。

8樓:匿名使用者

滅菌的一次性使用的塑料製品基本上無rna酶,可以不經預處理直接用於製備和貯存rna。實驗室用的普通玻璃器皿和塑料製品經常有rna酶法染,使用前必須於180 ℃乾烤8小時或更長時間(玻璃器皿)或用氯仿沖洗(塑料製品)。另一種方法是用0.

1 %焦碳酸二乙酯(depc)的水溶液浸泡用於製備rna的燒杯,試管和其他用品。depc是rna酶的強烈抑制劑,但其作用並不是絕對的(fedorcsak和ehrenberg,1966)。灌滿depc的玻璃或塑料器皿在37℃放置2小時,然後用滅菌水淋洗數次, 並於100℃乾烤15分鐘(kumar和lindberg,1972)。

在15 lbf/in2(高壓蒸氯滅菌15分鐘。上述處理可以除去器甲上痕量的depc,以防depc通過羧甲基化作用對rna的嘌呤鹼基進行修飾。

羧甲基化的rna在無細胞體系中翻譯效率很低,然而,除非其中大部分嘌呤鹼基均被修飾,否則其形成dna:rna或rna:rna雜交體的能力並不明顯降低。

用於rna電泳的電泳槽應用去汙劑洗乾淨,再用水沖洗,用乙醇乾燥,然後灌滿3%的h2o2溶液,於室溫放置10分鐘,然後用 %depc處理水徹底沖洗電泳槽。最好能留出一些玻璃器皿、塑料製品和電泳槽作上特殊標記,存放在指定地點,為rna實驗專用。

9樓:匿名使用者

降解方法可以用takara,兩步法先把rna轉為cdna,然後再pcr,這樣不需要每次提rna,也可以一步內法加入totalrna。處理細節容:提取的時候,用到的器具需要depc的水處理後高壓。

去除外源性的rna酶對實驗影響,用trizol的話,分層取小心吸取,寧少取。電泳時可以用無rna酶的水配製的tbs,然後150v,10min,若電泳時間長,產生的熱也容易使rna降解。同時電泳也可以說明蛋白質去除是否完全。

求提rna應注意的問題,詳細一些

10樓:色彩檔案

器皿要depc處理或者180度1小時;

水要depc處理37度過夜處理;

試劑要depc處理水配置;

槍頭、離心管最好一次性的專業rna專用的,沒有要depc處理過夜;

操作時口罩、手套都要,並且少講話;

組織用液氮研磨磨碎,在加試劑盒如trizol研磨徹底磨碎;

電泳時間要短,10多分鐘就好。還有麼?你出什麼問題?

11樓:匿名使用者

首先,所有用的器皿,以及試驗台等都要是無rna酶汙染的,戴口罩手套什麼的,這都是必備的。第二,考慮下所提取的材料是否新鮮,第三,考慮下試劑盒是否適合提你的材料,有些特殊的材料,需要用特殊的試劑盒。

植物總rna提取為什麼要加入液氮研磨

12樓:匿名使用者

1、使細胞變脆,便於破碎。

2、低溫保護rna,使不被降解。

rna的提取方法

13樓:逯暮森香梅

1.提bai

取稱取鮮酵母du

159或幹酵母粉。,倒入zhi

100ml三角瓶中,加。

daonacl,水25ml,攪拌均勻,置於專沸水浴屬中提取lh。

2.分離。將上述提取液用自來水冷卻後,裝入大離心管內,以4000r/min離心10min,使提取液與菌體殘渣等分離。

3.沉澱rna

將離心得到的上清液傾於50ml燒杯內,並置入放有冰塊的250ml燒杯中冷卻.待冷至10℃以下時,用6mol/l

hci小心地調節ph值至注意嚴格控制ph)。調好後繼續於冰水中靜置10min,使沉澱充分,顆粒變大。

4.洗滌和抽濾。

上述懸浮液以。

4000r/min離心。

10min,得到。

rna沉澱。將沉澱物放在。

10ml小燒杯內,用95%的乙醇。

5~10ml充分攪拌洗滌,然後在布氏漏斗上用射水幫浦抽氣過濾,再用。

95%乙醇5~10ml淋洗。

3次。5.乾燥。

從布氏漏斗上取下沉澱物,放在6cm表面皿上,鋪成薄層,置於80℃烘箱內乾燥。將乾燥後的rna製品稱重,存放於乾燥器內。

14樓:匿名使用者

核酸的提取bai

一般有離心du柱型,溶液型和磁珠法三種zhi,原理dao及步驟基本相版。

同,雖然各公司推出了多種權類似產品,讓人不知如何去選擇,但從原理和操作步驟看,基本就是離心柱型,溶液型或者磁珠法。一般來說,離心柱提取純度高一些,我們實驗室用的biodai離心法,處理量也能達到1000ul。

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